Отдел молекулярной генетики ИЭМ
Исследование металлопротеидов

Церулоплазмин

Этапы исследования
Физико-химические свойства и структура
Ионы меди в составе молекулы и строение активного центра
Организация и экспрессия гена
Метаболизм меди
Метаболизм железа
Ферментативная активность: антиоксидант и прооксидант
Церулоплазмин в центральной нервной системе
Регуляция уровня биогенных аминов
Ингибирование NO-зависимого клеточного ответа
Белок-белковые комплексы
Филогения и свойства медьсодержащих белков
Гомологи церулоплазмина
Наследственные заболевания
Диагностическое и фармакологическое применение
Список литературы

Этапы исследования

В 1944 году церулоплазмин (ЦП) был впервые описан шведскими учеными Холмбергом и Лауреллом [Holmberg, 1944], и подробно охарактеризован спустя несколько лет. Тогда же он получил свое название, означающее “небесно-голубой белок плазмы” [Holmberg & Laurell, 1948; Holmberg & Laurell, 1951]. После того, как была подробно изучена способность ЦП окислять Fe2+ до Fe3+ и доказано физиологическое значение этой реакции [Osaki, 1966], белок получил также систематическое название согласно Международной Классификации Ферментов - “ферро-О2-оксидоредуктаза, КФ 1.16.3.1”. Часто используется более короткое название - ферроксидаза.

Физико-химические свойства и структура

ЦП — медьсодержащий гликопротеид, относящийся к a 2-глобулиновой фракции плазмы крови млекопитающих. В состав молекулы ЦП входит по различным данным 6-7 ионов меди [Mukhopadhyay et al., 1997; Lindley, 1997]. Тот факт, что большая часть меди в сыворотке крови здорового человека, до 95%, входит в состав ЦП [Magdoff-Fairchild et al., 1969], кажется убедительным аргументом в пользу предположения о способности этого белка транспортировать медь.

В настоящее время установлено, что ЦП человека состоит из одной полипептидной цепи [Ryden, 1971]. Ее длина, как показало определение первичной структуры белка, составляет 1046 амк.о. При хроматографии на гидроксилапатите разделяются две изоформы ЦП [Broman, 1958]. Четыре олигосахаридные цепи присутствуют в преобладающей изоформе ЦП I типа и три в изоформе ЦП II типа. Олигосахаридные цепи соединены с белковой цепью N-гликозидной связью с остатками аспарагина в 179, 339 (нет в изоформе II), 378 и 743 позиции [Takahashi, 1984].

Молекулярная масса суммы амк.о. – 120,09 кДа; молекулы в целом составляет ~ 132 кДа (с учетом углеводных цепей и ионов меди), по данным исследования кристаллов ЦП ~ 132± 4 кДа [Magdoff-Fairchild et al., 1969].

Препараты ЦП различных видов млекопитающих имеют несущественные отличия по олигосахаридному составу и по первичной структуре, т.е. ЦП является консервативным белком. Однако, ЦП человека и быка различным образом гидролизуются при ограниченном протеолизе трипсином [Boivin et al., 2001], а ЦП крысы [Ryan et al., 1992] и дельфина [Bonaccorsi di Patti et al., 1992; Calabrese et al., 1997; Захарова и др., 2002] устойчивее к протеолитической атаке по сравнению с ЦП человека.

Полипептидная цепь ЦП легко фрагментируется в реакции ограниченного протеолиза [Ryden, 1971; Sang, 1995], причем ее разрыв происходит всегда по определенным пептидным связям, что приводит к образованию одних и тех же фрагментов. С помощью сайт-направленного мутагенеза был получен ЦП человека, не подвергавшийся протеолизу [Bielli, 2001]. В результате замены K 887 был исключен протеолиз с образованием при SDS-ЭФ в ПААГ 110 и 19 кДа фрагментов. Замена по R 481 исключила дальнейший протеолиз 110 кДа-фрагмента на 67 и 52 кДа фрагменты, и, наконец, замена по R 701 исключила дальнейший протеолиз 52 кДа-фрагмента на 28 и 25 кДа фрагменты.

Ниже приведена схема протеолитического расщепления молекулы ЦП на фрагменты [Ortel et al., 1984]:

132 кДа

110 кДа

19кДа

92 кДа

28 кДа

19кДа

67 кДа

52 кДа

19кДа

49 кДа

18 кДа

25 кДа

28 кДа

19кДа

Молекула ЦП включает три гомологичных домена, каждый из которых, в свою очередь, состоит из двух субдоменов.

Ионы меди в составе молекулы и строение активного центра

Ионы меди, входящие в состав белков, исходя из их спектральных свойств, разделяют на три группы. Спектральные характеристики ионов Cu+2 II типа, входящих в состав белков, близки к таковым у низкомолекулярных комплексов меди, имеющих бледно-голубое окрашивание, благодаря d-d переходам в области 600-800 нм спектра поглощения Cu+2. После получения четкого сигнала ЭПР стало ясно, что в роли лигандов иона меди II типа в белках выступают четыре атома азота имидазольных колец His [Dawson et al., 1979]. В пользу имидазольного лигандирования Cu+2 II типа говорят и результаты исследований этого иона методом спинового эха [Mondovi et al., 1977].

В отличие от Cu+2 II типа, ионы меди III типа имеют ряд специфических спектральных характеристик, что вызвано особенностями их лигандирования. Эти ионы существуют в виде пар, расстояние между ионами обычно находится в пределах 0.34-0.45 нм [Brown et al., 1980], так что неспаренные электроны внешнего уровня имеют взаимно компенсированные спины. Поэтому в своем обычном состоянии Cu+2 III типа не дают вклада в спектр ЭПР, они имеют характерную полосу с максимумом поглощения при 330-340 нм [Beltramini et al., 1990]. Как и Cu+2 II типа, ионы меди III типа лигандируются атомами азота имидазолов His. Для образования центра связывания ионов меди III типа белковая глобула должна иметь своеобразный гистидиновый кластер, в котором неоднократно встречается последовательность His-X-His [Messerschmidt & Huber, 1990].

Ионы меди I типа характеризуются сильным поглощением в области около 600 нм (максимум поглощения ЦП находится при 610 нм), в результате белки, их содержащие, приобретают интенсивную голубую окраску. Ион меди I типа имеет в качестве обязательных лигандов два атома азота имидазолов His и атом серы Cys. Как правило, в качестве четвертого лиганда выступает еще один атом серы Met. Весь центр связывания Cu+2 I типа имеет форму неправильного тетраэдра, что, вероятно, является компромиссом между формой полноценного тетраэдра, характерной для Cu+, и квадратно-плоскостной координацией Cu+2 в составе низкомолекулярных комплексов меди или неголубых медьпротеидов [Lu et al., 1993]. Скорее всего, требуя наименьших энергетических затрат на реорганизацию центра, такая форма обеспечивает необычайно быстрые переходы иона меди I типа из одного состояния окисления в другое и обратно, что, в свою очередь, дает голубым белкам возможность эффективно участвовать в реакциях переноса электронов.

Ион меди

Лигандирующие амк.о.

Исследованные мутации [Hellman et al., 2002]

Тип I (домен 2)

H276, C319, H324

H276Q

Тип I (домен 4)

H637, C680, H85, M690

H637Q, C680S

Тип I (домен 6)

H975, C1021, H1026, M1031

H1026Q

Тип II (домен 6)

H101, H978

H101Q

Тип III (домен 6)

H163, H980, H1020

H163Q

Тип III (домен 1)

H103, H161, H1022

H103Q

В состав активного центра ЦП входят ионы меди всех трех типов. Согласно данным кристаллографических исследований, молекула ЦП содержит 6 прочно связанных ионов меди [Lindley, 1997]. Три из них - ионы “голубой” меди, один – Cu+2 II типа, оставшиеся два составляют диамагнитный центр III типа. Ионы меди III типа обеспечивают сохранение стабильной структуры молекулы ЦП [Vachette et al., 2002].

За низкоаффинное связывание 7-го иона меди, экспонированного на молекуле ЦП ответственен H426 [Mukhopadhyay et al., 1997], этому иону приписывают прооксидантные свойства.

Ген протяженностью в 65 kb, кодирующий ЦП, локализован на хромосоме 3 (q23-q24) и содержит 20 экзонов [Daimon et al., 1995]. Анализ 5`-фланкирующего региона гена ЦП крысы показал наличие TATAAA (-30 bp) и AACCAATCT (-102 bp) сайтов, а также выявил сайты, гомологичные сайту альбумина D [Fleming and Gitlin, 1992]. В гепатоцитах в результате альтернативного сплайсинга образуется два вида иРНК протяженностью в 4.2 и 3.7 kb, первая из которых содержит длинный полиаденилированный конец в 3'-нетранслируемой области, выполняющий регуляторную роль [Yang et al., 1986]. Концентрация ЦП в крови повышается во время воспаления, инфекции и продолжительных травматических состояний в результате активации транскрипции гена ЦП индуцированной g -интерфероном [Sampath et al., 2003] и цитокинами [Gitlin, 1988]. При дефиците железа происходит активация транскрипции гена ЦП гипоксия-индуцибельным фактором 1 (HIF-1), который также активирует гены эритропоэтина, оксигеназы-1 гема, трансферрина и его рецептора [Mukhopadhyay et al., 2000]. Синтез ЦП регулируется на уровне иРНК белковым фактором, связывающимся с полиаденилированным концом, и эукариотическим фактором инициации транскрипции 4G [Mazumder et al., 2001]. На мембране клеток ЦНС (астроцитов, лептоминингеальных клеток) и клетках Сертоли, в результате альтернативного сплайсинга между 19 и 20 экзонами, находится ЦП с GPI-якорем на С-конце. Это, вероятно, связано с необходимостью осуществления функций присущих ЦП в районах, отграниченных от поступления ЦП крови гематоэнцефалическим и гематотестикулярным барьерами [Patel et al., 2000; Mittal et al., 2003; Fornta et al., 1999]. Экспрессия ЦП в ЦНС продемонстрирована в основных структурах мозга, в т.ч. сетчатке глаза [Klomp et al., 1996; Klomp & Gitlin, 1996]. В эндоплазматическом ретикулуме происходит N-гликозилирование ЦП по остаткам аспарагина. Встраивание в ЦП ионов меди, вероятно, происходит в транс-сети аппарата Гольджи. Рецепторы для ЦП выявлены на клетках аорты и сердца цыплят [Stevens et al., 1984], эритроцитах [Barnes & Friden, 1984], моноцитах, гранулоцитах и лимфоцитах [Kataoka & Tavassoli, 1985], эндотелии печени и клетках Купффера [Kataoka & Tavassoli, 1984], а также яйцеклетках [Orena et al., 1986].

Метаболизм меди

Уже довольно давно было высказано предположение о способности ЦП транспортировать в организме медь [Broman, 1967]. В пользу этого говорит тот факт, что большая доля ионов меди в плазме крови входит в состав ЦП [Magdoff-Fairchild et al., 1969]. Последующие наблюдения поставили под сомнение справедливость этой гипотезы. До недавнего времени считалось, что за исключением доставки меди, поступающей в русло крови и печень (при котором медь связана с альбумином и с некоторыми низкомолекулярными соединениями) весь транспорт меди – между печенью и другими органами – осуществляется ЦП [Marceau & Aspin, 1972]. Однако, исследования на мышах с ацерулоплазминемией и применением 64Cu меток показали, что ЦП не играет критической роли ни при абсорбции, ни при экскреции меди организмом [Meyer et al., 2001]. И все же ЦП маркирует нарушения обмена меди, а ниже будет рассмотрена взаимосвязь метаболизма меди и железа посредством ЦП.

После поглощения ионов меди энтероцитами и поступления в кровяное русло, медь, находясь в комплексах с белками плазмы, пептидами и аминокислотами, поступает в гепатоциты с помощью медного транспортера hCtr1, активность которого ингибируется ионами Cd2+, Mn2+, Zn2+ и Co2+. В цитоплазме гепатоцита медь распределяется между шаперонами (HCOX17, HAH1/Atox1, hCCS), которые распределяют медь по клеточным депо, расходующим ее по мере синтеза медьсодержащих белков. HAH1/Atox1 поставляет ионы меди АТФ-азе Р-типа (ATP7B, ген локализован на 13 хромосоме), находящейся в транс-сети аппарата Гольджи. ATP7B встраивает ионы меди в ЦП, обеспечивает их экскрецию вместе с желчью и везикулярный траспорт ионов меди. В цитоплазме ионы меди находятся в комплексе с глутатионом (GSH), который препятствует токсическому действию активных форм кислорода. Механизмы секреции меди с желчью еще не разъяснены до конца. Вероятно, секреция осуществляется двумя путями: везикулярный транспорт, который можно ингибировать с помощью колхицина, и опосредованный канальцевым транспортером органических анионов (сМОАТ) транспорт медного комплекса GSH [Fuentealba & Aburto, 2003].

Метаболизм железа

Уже 70 лет назад впервые было отмечено, что при недостаточном поступлении меди в организм животные страдали анемией [Hart et al., 1928]. У подопытных животных, содержавшихся на медьдефицитной диете, через некоторое время наступало уменьшение концентрации сывороточного железа и меди эритроцитов, а затем резко снижалось количество эритроцитов в крови [Lahey et al., 1952].

Обнаружение ферроксидазной активности ЦП позволило предположить, что этот фермент является связующим звеном между обменом железа и меди. Среди всех субстратов ЦП минимальное значение Km ~ 0.65 mkM найдено для Fe2+ [Osaki, 1966]. Было показано, что измерение скорости встраивания Fe3+ в апо-ТФ может быть использовано для количественной оценки оксидазной активности ЦП. Кроме того, при использовании Fe2+ в сыворотке крови человека при рН=7.4 формируется Fe3+-ТФ, однако, без участия ЦП за сутки в ТФ встраивается 3-5 мг Fe3+ против 60 мг в присутствии ЦП [Frieden & Hsieh, 1976]. Учитывая суточную потребность в железе для человека (35-40 мг), можно сделать вывод, что ЦП необходим для поддержания нормального уровня окисленного железа в плазме крови.

Железо, присутствующее в пищевых продуктах в закисной (Fe2+) и окисной (Fe3+) формах, для поглощения мембраной энтероцита должно восстановиться до Fe2+ [Зайчик и Чурилов, 2001]. В щеточной каемке энтероцита присутствует апикальная мембранная редуктаза (FeR) и связанный с ней транспортер двухвалентных металлов DMT1 (Nramp2, DCT1, SLC11A2), которые осуществляют абсорбцию железа в тонком кишечнике. На базолатеральной мембране энтероцита присутствует другой транспортер железа - IREG1 (MTP1, ферропортин 1, SLC11A3), способствующий переносу Fe2+, которое затем окисляется гомологом ЦП – гефестином, встроенным в мембрану. Мутация в гене IREG1 (локализация - 2q32) ведет к гемохроматозу [Roy & Andrews, 2001].

Гефестин (локализация - Xq11-q12) принадлежит вместе с ЦП к одному суперсемейству белков. Структура гефестина (1158 амк.о.), смоделированная по третичной структуре ЦП и данным о последовательности кДНК, содержит гомологичный ЦП активный центр и участки связывания меди [Syed et al., 2002]. В отличие от ЦП, в молекуле гефестина один из доменов является трансмембранным [Anderson et al., 2002]. У мышей сцепленная с полом мутация в гене гефестина (sla) приводит к дефициту железа и анемии. Эксперименты на мышах с мутациями белков абсорбции железа и мышах дикого типа, содержавшихся на железодефицитной диете, показали, что DMT1 модулирует ответ на местные сигналы содержания железа, тогда как экспрессия генов IREG1 и гефестина увеличивается в ответ на системные изменения уровня железа [Chen et al., 2003]. Таким образом, потребность организма в железе в первую очередь отражается на апикальных белках энтероцита, а затем детерминирует экспрессию белков базолатеральной мембраны. Содержание железа в цитоплазме энтероцита контролирует активность транспортера DMT1 [Anderson et al., 2002]. Эксперименты по передаче микроэлементов плоду от матери, находившейся на железо- и медьдефицитной диете показали, что материнский организм минимизирует дефицит за счет увеличения экспрессии рецептора трансферрина, гефестина, а также увеличения содержания меди в печени, сыворотке и плаценте матери [Gambling et al., 2003]. У крыс, содержавшихся на железодефицитной диете, показано увеличение иРНК гефестина [Sakakibara and Aoyama, 2002].

Плацентарная медьсодержащая оксидаза (ПМСО) была изучена на культуре клеток BeWo плацентарного трофобласта человека, используемой как модель транспорта железа и меди. Подобно гефестину, ПМСО является мембраносвязанными 140 кДа-белком, обладающим ПФД-оксидазной активностью и реагирующим с антителами к ЦП. ПМСО является критическим звеном в обмене железа и меди клетками плаценты [Danzeisen et al., 2002].

GPI-заякоренный ЦП астроцитов физически связан с транспортером дивалентных металлов - IREG1, который не способен в отсутствии ЦП транспортировать железо из астроцита. Другой транспортер Fe2+ - DMT1 в нервной ткани опосредует отток железа в глиальные клетки от астроцитов [Jeong & David, 2003].

Подтверждением тесной зависимости обмена железа от ЦП у человека является ацерулоплазминемия, заболевание вызванное мутацией в гене ЦП, приводящей к утрате ферментативной активности ЦП. При этой мутации резко снижена оксидазная активность белка, что вызывает гемосидероз с обширными отложениями железа в тканях различных органов [Yoshida et al., 1995].

Некоторые ионы тяжелых металлов вызывают снижение активности ЦП в сыворотке крови. Эффективность этих ионов в порядке убывания следующая: Ag+>Cd2+>Mo6+>Zn2+ [Whanger & Weswig, 1970].

Из приведенных выше примеров видно, что ЦП занимает связующую позицию в метаболизме меди и железа - двух важнейших микроэлементов в организме млекопитающих.

Ферментативная активность: антиоксидант и прооксидант

В конце 70-х годов появились первые сообщения о способности ЦП играть роль “чистильщика” супероксидных анион-радикалов (О2· ) [Goldstein et al., 1979]. При этом действие фермента, как выяснилось, не зависит от его взаимодействия с веществами, предварительно восстановленными О2· , а, скорее, от взаимодействия с самим О2· , которое сходно по ряду параметров с действием супероксиддисмутазы. Позже J.Bannister и соавторы [Bannister et al., 1980] сделали вывод, что они наблюдали в экспериментах обычную реакцию окисления О2 · ферментом-оксидазой (ЦП), описываемую следующим уравнением:

4O2 · + 4H+ + O2 ® 4O2 + 2H2O,

тогда как реакция истинного дисмутирования, катализируемая супероксиддисмутазой, отличается тем, что место кислорода в ней занимает О2· , и уравнение принимает следующий вид:

3O2 · + 4H+ + 2O2 ® 3O2 + 2H2O2.

Также ЦП препятствует накоплению и действию токсических окисляющих радикалов в плазме крови за счет ферроксидазной активности:

4Cu(II) + 4Fe2+ ® 4Cu(I) + 4Fe3+; 4Cu(I) + O2 + 4H+ ® 4Cu(II) + 2H2O.

Катализируя окисление Fe2+ до Fe3+, фермент поддерживает соотношение Fe2+2 равным 4:1, обеспечивая четырехэлектронный перенос на О2 с образованной воды и предотвращая неферментативную реакцию, в результате которой образуется О2·:

Fe2+ + О2 ® Fe3+ + О2 · .

Окисляя Fe2+ до Fe3+ ЦП может препятствовать реакции Фентона: образования OH· радикалов при взаимодействии Fe2+ c H2O2,:

Fe2+ + H2O2 ® Fe3+ + OH- + OH· .

С помощью сайт-направленного мутагенеза для ферроксидазной реакции доказана важность амк.о.: E633, E567, H602, E935 и H940 [Brown et al., 2002].

Способствуя встраиванию в ферритин окисленного Fe3+, ЦП ингибирует супероксидное и ферритин-зависимое перекисное окисление липидов (ПОЛ) [Samokyszyn et al., 1989]. Описанные выше свойства ЦП послужили основой для объяснения его противовоспалительной активности, что вместе с быстрым возрастанием концентрации ЦП (в 2-3 раза) в русле крови уже в начале воспалительной реакции позволяет причислить его к белкам “острой фазы” [Whanger & Weswig, 1970]. Показано, что ЦП может выступать как фактор роста, вследствие антиоксидантных свойств [Alcain et al., 1991].

Пептиды - карнозин, гомокарнозил и ансерин способны препятствовать свободно-радикальному образованию дитирозиновых сшивок в ЦП [Kang et al., 2002]. Эти пептиды также препятствуют образованию под действием системы ЦП/H2O2 агрегатов a-синуклеина, ключевого компонента телец Леви патогномонических для болезни Паркинсона [Kim et al., 2002]. В присутствии гомоцистеина ЦП способен ускорять окисление липопротеинов низкой плотности (ЛПНП) за счет восстановления ионов Cu2+ в ЦП до Сu+ [Exner et al., 2002]. Альдегидная группа глюкозы также способна усилить действие ЦП в процессе окисления ЛПНП [Leoni et al., 2002]. Окисление ЛПНП зависит также от интактности молекулы ЦП и количества ионов меди, связанных с ЦП [Mukhopadhyay et al., 1996]. С помощью сайт-направленного мутагенеза по замене лигандирующих медь His был определен участок молекулы в районе H426, ответственный за прооксидантные свойства ЦП [Mukhopadhyay et al., 1997].

In vivo было продемонстрировано защитное действие ЦП при действии на клетки HepG2 концентраций NO превышающих физиологические.

4GSH + 4NO + O2 ® 4GSNO + 2H2O

ЦП катализирует образование нитротиолов, при реакции GSH и NO происходит перенос электрона из NO с иона меди I типа на кластер ионов меди II и III типа с последующим четырехэлектронным переносом на кислород и образованием воды [Inoue et al., 1999].

GPI-форма ЦП сетчатки, вероятно, противостоит опосредованному квантами света окислительному стрессу и препятствует накоплению железа, которое приводит к помутнению сетчатки у больных с дефектом гена ЦП. Поскольку уровень ЦП-мРНК возрастает в 8 раз после освещения сетчатки, был выявлен во всех типах клеток сетчатки и превосходил количество ЦП, найденное в остальных структурах мозга [Chen et al., 2003].

Церулоплазмин в центральной нервной системе

Экспрессия гена ЦП в ЦНС была обнаружена в сетчатке и некоторых структурах мозга мыши и человека [Klomp et al., 1996; Klomp & Gitlin, 1996]. У больных ацерулоплазминемией наблюдаются осложнения, вызванные свободно-радикальными процессами и отложениями железа в тканях, в т.ч. в нервной, и, как следствие этого, нарушение функций ЦНС и помутнение сетчатки. Эти факты убеждают в значимости ЦП, как антиоксиданта и ключевого звена метаболизма железа в ЦНС. Действительно, нарушение системы GPI-заякоренный ЦП и IREG1 на мембране астроцита нарушает отток железа в глиальные клетки опосредованный DMT1 [Jeong & David, 2003]. Высказано предположение об антиоксидантном и детоксицирующем действии ЦП на цереброспинальную жидкость [Mittal et al., 2003].

С помощью техники patch-clamp на клетках нейробластомы была продемонстрирована способность ЦП осуществлять быструю деполяризацию мембраны. Термически денатурированный или лишенный меди ЦП не обладал этой способностью. Деполяризующий эффект ЦП опосредован ингибированием K+-каналов, а не увеличением притока Na+ или Ca2+ ионов [Wang et al., 1995]. Предварительная обработка сывороточной аминооксидазой быка ингибировала деполяризующее действие ЦП, кроме того, аминооксидаза активировала K+-каналы ингибированные ЦП [Wu et al., 1996]. Эксперименты на модели развития нервных клеток – линии Р 19 эмбриональной карциномы мыши, продемонстрировали действие ЦП на агрегацию нейронов вышедших в дифференцировку. Наблюдалась зависимость как от концентрации ЦП, так и от времени начала выхода клеток в дифференцировку. Другие медьсодержащие белки сыворотки, комплексы меди и денатурированный ЦП не обладали способностью вызывать агрегацию клеток. Было отмечено связывание меченного ЦП, очевидно посредством рецептора на поверхности молодых клеток, а также уменьшения этого взаимодействия со старением нейронов [Maltais et al., 2003].

Регуляция уровня биогенных аминов

В число субстратов, окисляемых ЦП, входят норадреналин, относящийся к катехоламиновым гормонам, и такой нейрогуморальный агент, как 5-гидрокситриптамин (серотонин) [Wallas et., 1964]. Молекулярный механизм, лежащий в основе катализа, до конца не ясен, но участие ЦП в метаболизме нейромедиаторов центрального действия чрезвычайно важно, тем более, что местом действия ЦП, вполне вероятно, является ЦНС, поскольку фермент поглощается из плазмы крови клетками мозга [Linder & Moor, 1977].

Как оказалось, синтетический диэтиламид D-лизергиновой кислоты (ЛСД), известный своим галлюциногенным действием, подавляет окисление серотонина, но ускоряет окисление норадреналина и дофамина в мозгу [Barchas & Freedman, 1963], и в концентрации, равной 10% от концентрации нейромедиатора, ЛСД угнетает катализируемое ЦП окисление серотонина в 2 раза, тогда как скорость окисления норадреналина увеличивается в 4 раза. Величины Km для норадреналина и серотонина близки - 3 мкМ и 1 мкМ, соответственно. Вполне вероятно, что ЦП контролирует их соотношение в мозговых структурах, и тогда действие ЛСД на ЦНС объясняется нарушением баланса между ними.

Ингибирование NO-зависимого клеточного ответа

Оксид азота (NO), помимо регуляции агрегации тромбоцитов, участия в нейромедиаторных процессах и других функций, участвует также в передаче сигнала от эндотелиальных клеток к гладкомышечным. В ответ на действие ацетилхолина, повышающего концентрацию ионов Ca2+, который активирует NO-синтетазу, из аргинина образуется NO и цитрулин. NO диффундирует в гладкомышечную клетку, где активируя гуанилатциклазу, вызывает мышечное расслабление, опосредованное активацией cGMP-протеинкиназы. Было продемонстрировано ингибируещее действие физиологических концентраций ЦП на расслабление аорты кролика [Cappelli-Bigazzi, 1997]. Действие ЦП и гистидинового медного комплекса, но не свободной меди, уменьшало уровень NO, цитрулина и cGMP, что свидетельствует об опосредованном ЦП ингибировании NO-синтетазы. Косвенно, это подтверждается данными об увеличении риска сердечно-сосудистых заболеваний у пациентов с повышенным уровнем меди сыворотки [Bianchini et al., 1999].

Белок-белковые комплексы

В 90-х годах в свете обнаружения белковых комплексов ЦП, стало возможно говорить о его новых функциях. В процессе свертывания крови, в результате протеолиза церулоплазминоподобные кофакторы F V и F VIII, активируются, и принимают конформацию, благоприятную для образования комплексов с протеазами F IXa и F Xa, активирующими F II и F X. Антикоагулянт, протеин С, в результате ограниченного протеолиза F Va и F VIIIa способен ингибировать протеолитический каскад свертывания крови. Находясь в конкурентных отношениях с факторами свертывания крови (ФСК) за связывание с протеином C, ЦП мог бы участвовать в регуляции коагуляции. Декапептид ЦП (1028HAGMETTYTV1037) разобщает комплекс ЦП с протеином С и снимает эффект 5-кратного увеличения активности ЦП в комплексе [Walker & Fay, 1990]. Однако, после сообщения о взаимодействии ЦП с протеином С, ряд гематологов поставили под сомнение гипотезу о способности усиливать коагуляцию ЦП in vivo, что было подтверждено исследованиями показателей гемостаза у здоровых людей и у пациентов с дефектами F V [De Visser et al., 2002]. Взаимодействуя с миелопероксидазой [Segelmark et al., 1997], ЦП ингибирует ее опасные прооксидантные свойства:

H2O2 + Cl- ® ClO- + H2O.

Вероятно, это имеет значение при чрезмерной активации кислородного взрыва в очаге воспаления и распространение его по руслу крови. Однако, взаимодействие с миелопероксидазой не влияет на оксидазные, на пероксидазные и иммунореактивные свойства ЦП [Park et al., 2000].

Группа Aust показала, что для полноценного встраивания Fe3+ в ферритин важны не только ферроксидазная активность ЦП, но также взаимодействие интактной молекулы ЦП с ферритином [Juan & Aust, 1998; Reilly et al., 1998; Van Eden & Aust, 2000].

Взаимодействие ЦП с нейропептидом PACAP 38 [Tams et al., 1999], возможно, играет определенную роль в нейрорегуляторных процессах, и особенно интересно в свете обнаружения мембраносвязанного ЦП в астроцитах, который участвует в регуляции уровня железа в ЦНС и предотвращении свободно-радикальных реакций [Patel & David, 1997; Patel et al., 2002]. Было продемонстрировано, что среди всех белков плазмы крови, именно ЦП связывается PACAP 38, кроме того, для этого взаимодействия достаточно С-концевого декапептида (29-38) [Tams et al., 1999].

Взаимодействие ЦП с ЛФ [Zakharova et al., 2000], бактерицидным белком нейтрофилов, молока и других секретов, интересно в свете бактерицидного действия ЦП в присутствии Fe2+ и фосфатов [Klebanoff, 1992]. В экспериметрах in vivo была показана циркуляция комплекса ЦП крысы – ЛФ человека в течение 5 часов после введения крысе 10 мг ЛФ [Zakharova et al., 2000]. Эксперименты in vitro указывают на возможность встривания ионов меди в ЛФ при протеолитической или окислительной деградации ЦП. Продемонстрирована электростатическая природа этого взаимодействия, а также увеличение аффинности комплекса при протеолизе ЦП [Pulina et al., 2002].

GPI-заякоренный ЦП астроцитов физически взаимодействует с IREG1 и способствует оттоку Fe3+ из астроцитов. Взаимодействие доказано с помощью коиммунопреципитации и колокализации на мембране астроцита при двойной метке флуоресцентными антителами к ЦП и IREG1 [Jeong and David, 2003].

Филогения и свойства медьсодержащих белков

Доменная организация ЦП позволяет выдвинуть гипотезу о его происхождении вследствие трипликации предкового гена, кодирующего примитивную оксидазу [Dwulet & Putnam, 1981]. Оксидазы других представителей живого мира во многом гомологичны ЦП, что говорит в пользу гипотезы происхождения медьсодержащих оксидаз от общего гена [Ohkawa et al., 1989; Ryden, 1988].

 

Представитель суперсемейства

Группа

Число амк.о.

Ионов Cu

Стеллацианин

Бактерии

164

1

Амицианин

Бактерии

100

1

Азурин

Бактерии

130

1

Псевдоазурин

Бактерии

100

1

Пластоцианин

Бактерии/растения

100

1

Лакказа

Грибы/растения

468/858

4/8

Аскорбат оксидаза

Растения

540

4

Церулоплазмин

Позвоночные

1046

6 (7)

Суперсемейство купредоксинов включает следующих представителей: рустицианин, стеллацианин, амицианин, азурин, псевдоазурин, пластоцианин, медьсодержащая нитрит-редуктаза (К.Ф. 1.7.99.3), лакказа (К.Ф. 1.10.3.2), L-аскорбат оксидаза (К.Ф. 1.10.3.3), церулоплазмин (К.Ф. 1.16.3.1), цитохром С-оксидаза (полипептид II, К.Ф. 1.9.3.1), убихинон-оксидаза (полипептид II, К.Ф. 1.10.3.-). Это суперсемейство служит лучшим примером вариации содержания металлопростетических групп, в нем представлены все типы сайтов связывания ионов Cu. При этом степень гомологии не кореллирует с содержанием ионов Cu и электрон-транспортной функцией [Todd et al., 2001]. Поскольку детальное описание каждого из филогенетических родственников ЦП выходит за рамки рассматриваемой проблемы, в этом разделе будут очерчены лишь общие принципы организации и функционирования конкретных белков и их филогенетические связи.

Хотя медьсодержащие белки широко распространены как у прокариот, так и у эукариот, до недавнего времени ферменты, сходные с лакказой, были найдены только у эволюционно более продвинутых групп [Ryden and Hunt, 1993]. Как показал анализ выравнивания первичных последовательностей, совмещения трехмерных структур, и построение филогенетического древа, медьсодержащие оксидазы эволюционировали посредством дупликации и последовательной дивергенции от группы малых медьсодержащих электрон-транспортных белков. Самым ранним было расхождение пластоцианина и азурина, связанное с отделением фотосинтезирующих от остальных групп бактерий, что произошло около 3· 109 лет назад. Азурин явился предком субъединицы цитохром С-оксидазы. Расхождение растений и животных, вероятно, произошло 1.4· 109 лет назад и соответствовало разделению потомков пластоцианина ветви лакказы и аскорбат оксидазы от не триплицированного предка церулоплазмина. Церулоплазмин и церулоплазминоподобные ФСК F V и F VIII разошлись приблизительно 0.5-0.8· 109 лет назад.

Гомология ЦП с ФСК F V и F VIII [Church et al., 1984; Pemberton et al., 1997] позволяет объединить их в одно суперсемейство белков. F VIII и F V [Mann et al., 1984] способны связывать ион Cu (I), который, вероятно, участвует в ассоциации тяжелой и легкой цепи F VIII [Tagliavacca et al., 1997]. Расположение дисульфидных мостиков в ЦП и F VIII, [Yang et al., 1986], также гомологично [McMullen et al., 1995], при 48% гомологии последовательностей.

Лакказа (бензендиол:О2-оксидоредуктаза) содержит четыре атома Cu: 1 I типа (одноэлектронный перенос), 1 II типа (реокисление Cu I типа, стабилизация H2O2-интермедиата) и 2 III типа (четырехэлектронный перенос на O2 с образованием H2O) [Piontek et al., 2002]. Лакказы используют O2 для окисления фенольных производных (пирогаллол, п-крезол, 2,6-димелитоксифенол), ароматических аминов, а также органических полимеров – лигнина и гумминовых кислот, посредством одноэлектронного переноса, сопровождающегося образованием свободных радикалов. Cпектральными методами в остановленной струе показано образование свободных радикалов в тринуклеарном центре за счет магнитного взаимодействия с ионом Cu III типа при неполном трехэлектронном переносе на O2 [Huang et al., 1999]. Физиологические функции лакказ не изучены достаточно полно, однако показано их участие в развитии спор и миелинизации у грибов, в ответе на повреждения и образовании лигнина у высших растений, а также в разложении органических остатков деградацией лигнина и гумминовых кислот. В последнее десятилетие обнаружено большое количество лакказо-подобных белков у прокариот [Claus, 2003]. Генетический анализ указывает на их участие в пигментации клеток и процессах окисления металлов.

Аскорбат оксидаза (L-аскорбат:О2-оксидоредуктаза) представляет собой 140 кДа-димер, составленный из мономеров, содержащих четыре атома Cu: 1 I типа, 1 II типа и 2 III типа. Тринуклеарный центр образован парой ионов Cu III типа и находящимся на расстоянии 1.23 нм ионом Cu II типа [Farver and Pecht, 1992]. Синтез аскорбат оксидазы индуцируется светом и растительными гормонами. Продемонстрировано влияние этого фермента на рост растений [Pignocchi et al., 2003].

Гомологи церулоплазмина

Под гомологами в данном разделе подразумеваются не гефестин и ПМСО – медьпротеиды млекопитающих в высокой степени гомологичные ЦП, а медьсодержащие оксидазы микроорганизмов со сходными физиологическими функциями.

Одноклеточная водоросль Chlamydomonas reinhardtii экспрессирует 150 кДа-белок в условиях дефицита железа. Анализ нуклеотидной последовательности кДНК выявил сходство этого белка с гефестином, показал наличие трансмембранного домена и двух мотивов, характерных для медьсодержащих оксидаз, что предполагает ферроксидазную активность данного белка [Herbik et al., 2002].

Для модельных объектов Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe и Candida albicans, представителей царства грибов, найдены медьсодержащие оксидазы Fet3p, fio1+ и CaFet3p, ассоциированные с трансмембранными пермеазами железа Ftr1p, fip1+ и CaFtr1p, соответственно [Askwith and Kaplan, 1997; Hasset et al., 1998; Eck et al., 1999]. Среди этих оксидаз наиболее изучен Fet3p: с помощью сайт-направленного мутагенеза показаны критические для ферментативной активности амк.о. H489 и L494, гомологичные таковым у ЦП [Askwith and Kaplan, 1998]. Эксперименты с мутантными штаммами дрожжей Dfet3 показали, что экспрессия в них гефестина восстанавливает рост клеток на железодефицитной среде, а также продемонстрировали зависимость активности оксидазы от медьтранспортирующих белков ССС2 и GEF1 [Li et al., 2003].

Попытки найти ген лакказы у бледно-розового базидиомицета Phanerochaete chrysosporium привели к идентификации 75 кДа-белка MCO1. MCO1 окисляет разнообразные субстраты, включая ароматические амины, однако эти фенольные производные являются худшими субстратами, чем Fe2+ для которого найдено наименьшее значение Km около 2 mkM. Таким образом, геном данного базидиомицета экспрессирует вместо типичной лакказы уникальную внеклеточную ферроксидазу MCO1, а для разрушения растительных остатков такие ферменты, как лигнин пероксидазу, пероксидазу марганца и глиоксаль пероксидазу [Larrondo et al., 2003].

Наследственные заболевания

Наиболее частым наследственным заболеванием (1/30 000), при котором наблюдается уменьшение количества ЦП, является гепатолентикулярная дегенерация, также называемая болезнью Вильсона-Коновалова. Заболевание было впервые описано в 1912 году А.К. Вильсоном, в нашей стране - Н.А. Коноваловым.

При данной болезни в печени наблюдается аутосомно-рецессивный дефект гена WND, продукт которого отвечает за экскрецию меди с желчью. Удобной моделью болезни Вильсона-Коновалова на грызунах являются крысы линии Long-Evans Cinnamon [Yamada et al., 1993]. Уровень холо-ЦП после введение этим животным аденовируса с геном WND (ATP7B) восстанавливается, при этом ATP7B локализуется в аппарате Гольджи [Terada et al., 1998].

Здоровые доношенные дети рождаются с низкой концентрацией ЦП в крови и запасами меди, сосредоточенными в печени. В течение первых месяцев концентрация ЦП в плазме растет и происходит перераспределение меди в организме. При болезни Вильсона-Коновалова этот процесс нарушен, и уровень сывороточного ЦП остается низким. Устанавливается положительный медный баланс, экскреция меди, поступающей в организм, затруднена. Гепатоциты подвергаются токсическому действию меди, развивается их жировое перерождение, формируется фиброз и цирроз печени. При разрушении гепатоцитов, медь эпизодически высвобождается из печени и откладывается в других органах и тканях, что обуславливает приступы гемолитической анемии и разнообразные, в основном, моторные, неврологические нарушения, связанные с отложением меди в ЦНС. В десцеметовой мембране лимба роговицы появляются патогномонические для данного заболевания золотисто-коричневые или зеленоватые кольца Кайзера-Флейшера. Это может сопровождаться катарактой, артритами, холелитиазом и уролитиазом, синдромом Фанкони. Часто сопровождается гиперхолестеринемией и инсулинорезистентностью. Избыток меди в стенках сосудов способствует развитию атеросклероза [Зайчик и Чурилов, 2001]. Нередко болезнь Вильсона-Коновалова сопровождается развитием болезни Паркинсона [Johnson, 2001].

При болезни Менкеса (или "курчавости волос") происходит еще более сложное нарушение обмена меди, сцепленного с X-хромосомой рецессивного характера. Дефицит меди возникает в печени, мозге, сосудах и сыворотке крови. При этом в кишечнике, почках и фибробластах кожи ее содержание нормально или повышено. Снижено количество ЦП и имеется дефицит активности тканевых аминооксидаз. Нарушается образование перекрестных связей в коллагене и эластине. Развивается картина, похожая на экспериментальный дефицит меди у животных, но без признаков анемии. Доминирует нарушение стабильности соединительно-тканных структур. Это выражается в аневризмах, эмфиземе, остеопорозе, иногда следует разрыв сердца. Волосы больных имеют курчавый вид [Зайчик и Чурилов, 2001].

В настоящее время известно более десятка моделей нарушений метаболизма меди у животных: вышупомянутые крысы линии LEC и мыши с токсичным молоком, Bedlington и West Highland белые террьеры, овцы North Ronaldsay, примененные для изучения индийского детского цирроза печени, доберманы пинчеры и Skye террьеры с хроническим гепатитом, сходным с первичным желчным циррозом у человека, далматинцы с повышенной активностью сывороточных аланин- и аспартат аминотрансфераз и сиамские коты с токсическими отложениями меди в печени [Fuentealba & Aburto, 2003].

Ацерулоплазминемия - наследственное заболевание, обусловленное дефектами гена ЦП. Ацерулоплазминемия сопровождается диабетом, накоплением железа в различных тканях, в т.ч. в нервной ткани, что ведет к помутнению сетчатки, непреднамеренным движениям, слабоумию. В глиальной ткани увеличен уровень ПОЛ, в митохондриях комплексы I и IV дыхательной цепи теряют более половины ферментативной активности [Harris et al., 1995; Miyajima et al., 2002]. Астроциты у таких больных деформированы, вплоть до шаровидной формы, накапливают маркер ПОЛ - 4-гидроксиноненал, а также глиальный фибриллярный кислый белок, белок S-100 и убиквитин, и похожи на астроциты 1 типа Альцгеймера [Kanaeko et al., 2002]. Мембраны эритроцитов содержат увеличенное количество длинноцепочечных жирных кислот - 17-цис-гексакозеновой (26:1) и гексакозановой (26:0), вероятно, вследствие ингибирования b -окисления в пероксисомах [Miyajima et al., 1998]. При патогистологическом исследовании биоптатов печени пациентов выявлены массивные отложения железа [Loreal et al., 2002].

21 мутация в гене ЦП была обнаружена у 24 семей со всего мира [Miyajima et al., 2003], в Японии частота оценивается как 1/2 000 000 неродственных браков [Miyajima et al., 1999]. Замена P177R приводит к задержке синтезированного ЦП в ЭПР, замена по гомологичному амк.о. в F VIII приводит к гемофилии А [Hellman et al., 2002]. Экспериментально получены мыши, гомозиготные по утрате гена ЦП, у которых развивается картина ацерулоплазминемии с выявлением нарушения обмена железа на гистологических препаратах [Harris et al., 1999].

Экзон

Изменения в гене (в белке)

Дополнительные сведения

3

CtrG (Gln146Glu)

[Bosio et al., 2002]

3-4

Ains601

[Okamoto et al., 1996]

6-7

A®G1209 (338stop)

[Yazaki et al., 1998]

7

TACACins1286

[Harris et al., 1995]

11

Gdel2068

[Hellman & Githlin, 2002]

13

Gdel2389

[Diamon et al., 1995]

14

Gdel2482

[Hellman & Githlin, 2002]

14

Gdel2510

[Hellman & Githlin, 2002]

15

C®T (Trp858ter)

[Takahashi et al., 1996]

16

C®T (Arg882ter)

[Takeuchi et al., 2002]

17

Ains2917

[Bosio et al., 2002]

17

T®G (His978Gln)

[Takeuchi et al., 2002]

17-18

G®A3019 (991stop)

[Yoshida et al., 1995]

Диагностическое и фармакологическое применение

В плазме крови в норме ЦП содержится в концентрации 0.20-0.40 мг/мл. Понижение уровня ЦП может быть обусловлено: болезнью Вильсона-Коновалова, синдромом Менкеса, ацерулоплазминемией, тяжелыми заболеваниями печени, снижением абсорбции меди, потерями с общим белком плазмы через кишечный или мочеполовой путь, а повышение уровня ЦП: хроническими воспалительными процессами, онкологическими заболеваниями, меланомой, шизофренией, инфарктом миокарда, поздними сроками беременности [Gutteridge & Stocks, 1981].

С недавнего времени ЦП стал медицинским препаратом, он используется как основной антиоксидант крови, стимулятор гемопоэза [Shimizu, 1979], уменьшающий интоксикацию и иммунодепрессию [Saenko et al., 1994; Бердинских и др., 1984; Сенюк и др., 1994].