Организация и экспрессия гена
Ген протяженностью в 65 kb, кодирующий ЦП, локализован на хромосоме 3 (q23-q24) и содержит 20 экзонов [Daimon et al., 1995]. Анализ 5`-фланкирующего региона гена ЦП крысы показал наличие TATAAA (-30 bp) и AACCAATCT (-102 bp) сайтов, а также выявил сайты, гомологичные сайту альбумина D [Fleming and Gitlin, 1992]. В гепатоцитах в результате альтернативного сплайсинга образуется два вида иРНК протяженностью в 4.2 и 3.7 kb, первая из которых содержит длинный полиаденилированный конец в 3'-нетранслируемой области, выполняющий регуляторную роль [Yang et al., 1986]. Концентрация ЦП в крови повышается во время воспаления, инфекции и продолжительных травматических состояний в результате активации транскрипции гена ЦП индуцированной g -интерфероном [Sampath et al., 2003] и цитокинами [Gitlin, 1988]. При дефиците железа происходит активация транскрипции гена ЦП гипоксия-индуцибельным фактором 1 (HIF-1), который также активирует гены эритропоэтина, оксигеназы-1 гема, трансферрина и его рецептора [Mukhopadhyay et al., 2000]. Синтез ЦП регулируется на уровне иРНК белковым фактором, связывающимся с полиаденилированным концом, и эукариотическим фактором инициации транскрипции 4G [Mazumder et al., 2001]. На мембране клеток ЦНС (астроцитов, лептоминингеальных клеток) и клетках Сертоли, в результате альтернативного сплайсинга между 19 и 20 экзонами, находится ЦП с GPI-якорем на С-конце. Это, вероятно, связано с необходимостью осуществления функций присущих ЦП в районах, отграниченных от поступления ЦП крови гематоэнцефалическим и гематотестикулярным барьерами [Patel et al., 2000; Mittal et al., 2003; Fornta et al., 1999]. Экспрессия ЦП в ЦНС продемонстрирована в основных структурах мозга, в т.ч. сетчатке глаза [Klomp et al., 1996; Klomp & Gitlin, 1996]. В эндоплазматическом ретикулуме происходит N-гликозилирование ЦП по остаткам аспарагина. Встраивание в ЦП ионов меди, вероятно, происходит в транс-сети аппарата Гольджи. Рецепторы для ЦП выявлены на клетках аорты и сердца цыплят [Stevens et al., 1984], эритроцитах [Barnes & Friden, 1984], моноцитах, гранулоцитах и лимфоцитах [Kataoka & Tavassoli, 1985], эндотелии печени и клетках Купффера [Kataoka & Tavassoli, 1984], а также яйцеклетках [Orena et al., 1986].
Метаболизм меди
Уже довольно давно было высказано предположение о способности ЦП транспортировать в организме медь [Broman, 1967]. В пользу этого говорит тот факт, что большая доля ионов меди в плазме крови входит в состав ЦП [Magdoff-Fairchild et al., 1969]. Последующие наблюдения поставили под сомнение справедливость этой гипотезы. До недавнего времени считалось, что за исключением доставки меди, поступающей в русло крови и печень (при котором медь связана с альбумином и с некоторыми низкомолекулярными соединениями) весь транспорт меди – между печенью и другими органами – осуществляется ЦП [Marceau & Aspin, 1972]. Однако, исследования на мышах с ацерулоплазминемией и применением 64Cu меток показали, что ЦП не играет критической роли ни при абсорбции, ни при экскреции меди организмом [Meyer et al., 2001]. И все же ЦП маркирует нарушения обмена меди, а ниже будет рассмотрена взаимосвязь метаболизма меди и железа посредством ЦП.
После поглощения ионов меди энтероцитами и поступления в кровяное русло, медь, находясь в комплексах с белками плазмы, пептидами и аминокислотами, поступает в гепатоциты с помощью медного транспортера hCtr1, активность которого ингибируется ионами Cd2+, Mn2+, Zn2+ и Co2+. В цитоплазме гепатоцита медь распределяется между шаперонами (HCOX17, HAH1/Atox1, hCCS), которые распределяют медь по клеточным депо, расходующим ее по мере синтеза медьсодержащих белков. HAH1/Atox1 поставляет ионы меди АТФ-азе Р-типа (ATP7B, ген локализован на 13 хромосоме), находящейся в транс-сети аппарата Гольджи. ATP7B встраивает ионы меди в ЦП, обеспечивает их экскрецию вместе с желчью и везикулярный траспорт ионов меди. В цитоплазме ионы меди находятся в комплексе с глутатионом (GSH), который препятствует токсическому действию активных форм кислорода. Механизмы секреции меди с желчью еще не разъяснены до конца. Вероятно, секреция осуществляется двумя путями: везикулярный транспорт, который можно ингибировать с помощью колхицина, и опосредованный канальцевым транспортером органических анионов (сМОАТ) транспорт медного комплекса GSH [Fuentealba & Aburto, 2003].
Метаболизм железа
Уже 70 лет назад впервые было отмечено, что при недостаточном поступлении меди в организм животные страдали анемией [Hart et al., 1928]. У подопытных животных, содержавшихся на медьдефицитной диете, через некоторое время наступало уменьшение концентрации сывороточного железа и меди эритроцитов, а затем резко снижалось количество эритроцитов в крови [Lahey et al., 1952].
Обнаружение ферроксидазной активности ЦП позволило предположить, что этот фермент является связующим звеном между обменом железа и меди. Среди всех субстратов ЦП минимальное значение Km ~ 0.65 mkM найдено для Fe2+ [Osaki, 1966]. Было показано, что измерение скорости встраивания Fe3+ в апо-ТФ может быть использовано для количественной оценки оксидазной активности ЦП. Кроме того, при использовании Fe2+ в сыворотке крови человека при рН=7.4 формируется Fe3+-ТФ, однако, без участия ЦП за сутки в ТФ встраивается 3-5 мг Fe3+ против 60 мг в присутствии ЦП [Frieden & Hsieh, 1976]. Учитывая суточную потребность в железе для человека (35-40 мг), можно сделать вывод, что ЦП необходим для поддержания нормального уровня окисленного железа в плазме крови.
Железо, присутствующее в пищевых продуктах в закисной (Fe2+) и окисной (Fe3+) формах, для поглощения мембраной энтероцита должно восстановиться до Fe2+ [Зайчик и Чурилов, 2001]. В щеточной каемке энтероцита присутствует апикальная мембранная редуктаза (FeR) и связанный с ней транспортер двухвалентных металлов DMT1 (Nramp2, DCT1, SLC11A2), которые осуществляют абсорбцию железа в тонком кишечнике. На базолатеральной мембране энтероцита присутствует другой транспортер железа - IREG1 (MTP1, ферропортин 1, SLC11A3), способствующий переносу Fe2+, которое затем окисляется гомологом ЦП – гефестином, встроенным в мембрану. Мутация в гене IREG1 (локализация - 2q32) ведет к гемохроматозу [Roy & Andrews, 2001].
Гефестин (локализация - Xq11-q12) принадлежит вместе с ЦП к одному суперсемейству белков. Структура гефестина (1158 амк.о.), смоделированная по третичной структуре ЦП и данным о последовательности кДНК, содержит гомологичный ЦП активный центр и участки связывания меди [Syed et al., 2002]. В отличие от ЦП, в молекуле гефестина один из доменов является трансмембранным [Anderson et al., 2002]. У мышей сцепленная с полом мутация в гене гефестина (sla) приводит к дефициту железа и анемии. Эксперименты на мышах с мутациями белков абсорбции железа и мышах дикого типа, содержавшихся на железодефицитной диете, показали, что DMT1 модулирует ответ на местные сигналы содержания железа, тогда как экспрессия генов IREG1 и гефестина увеличивается в ответ на системные изменения уровня железа [Chen et al., 2003]. Таким образом, потребность организма в железе в первую очередь отражается на апикальных белках энтероцита, а затем детерминирует экспрессию белков базолатеральной мембраны. Содержание железа в цитоплазме энтероцита контролирует активность транспортера DMT1 [Anderson et al., 2002]. Эксперименты по передаче микроэлементов плоду от матери, находившейся на железо- и медьдефицитной диете показали, что материнский организм минимизирует дефицит за счет увеличения экспрессии рецептора трансферрина, гефестина, а также увеличения содержания меди в печени, сыворотке и плаценте матери [Gambling et al., 2003]. У крыс, содержавшихся на железодефицитной диете, показано увеличение иРНК гефестина [Sakakibara and Aoyama, 2002].
Плацентарная медьсодержащая оксидаза (ПМСО) была изучена на культуре клеток BeWo плацентарного трофобласта человека, используемой как модель транспорта железа и меди. Подобно гефестину, ПМСО является мембраносвязанными 140 кДа-белком, обладающим ПФД-оксидазной активностью и реагирующим с антителами к ЦП. ПМСО является критическим звеном в обмене железа и меди клетками плаценты [Danzeisen et al., 2002].
GPI-заякоренный ЦП астроцитов физически связан с транспортером дивалентных металлов - IREG1, который не способен в отсутствии ЦП транспортировать железо из астроцита. Другой транспортер Fe2+ - DMT1 в нервной ткани опосредует отток железа в глиальные клетки от астроцитов [Jeong & David, 2003].
Подтверждением тесной зависимости обмена железа от ЦП у человека является ацерулоплазминемия, заболевание вызванное мутацией в гене ЦП, приводящей к утрате ферментативной активности ЦП. При этой мутации резко снижена оксидазная активность белка, что вызывает гемосидероз с обширными отложениями железа в тканях различных органов [Yoshida et al., 1995].
Некоторые ионы тяжелых металлов вызывают снижение активности ЦП в сыворотке крови. Эффективность этих ионов в порядке убывания следующая: Ag+>Cd2+>Mo6+>Zn2+ [Whanger & Weswig, 1970].
Из приведенных выше примеров видно, что ЦП занимает связующую позицию в метаболизме меди и железа - двух важнейших микроэлементов в организме млекопитающих.
Ферментативная активность: антиоксидант и прооксидант
В конце 70-х годов появились первые сообщения о способности ЦП играть роль “чистильщика” супероксидных анион-радикалов (О2· ) [Goldstein et al., 1979]. При этом действие фермента, как выяснилось, не зависит от его взаимодействия с веществами, предварительно восстановленными О2· , а, скорее, от взаимодействия с самим О2· , которое сходно по ряду параметров с действием супероксиддисмутазы. Позже J.Bannister и соавторы [Bannister et al., 1980] сделали вывод, что они наблюдали в экспериментах обычную реакцию окисления О2 · ферментом-оксидазой (ЦП), описываемую следующим уравнением:
4O2 · + 4H+ + O2 ® 4O2 + 2H2O,
тогда как реакция истинного дисмутирования, катализируемая супероксиддисмутазой, отличается тем, что место кислорода в ней занимает О2· , и уравнение принимает следующий вид:
3O2 · + 4H+ + 2O2 ® 3O2 + 2H2O2.
Также ЦП препятствует накоплению и действию токсических окисляющих радикалов в плазме крови за счет ферроксидазной активности:
4Cu(II) + 4Fe2+ ® 4Cu(I) + 4Fe3+; 4Cu(I) + O2 + 4H+ ® 4Cu(II) + 2H2O.
Катализируя окисление Fe2+ до Fe3+, фермент поддерживает соотношение Fe2+:О2 равным 4:1, обеспечивая четырехэлектронный перенос на О2 с образованной воды и предотвращая неферментативную реакцию, в результате которой образуется О2·:
Fe2+ + О2 ® Fe3+ + О2 · .
Окисляя Fe2+ до Fe3+ ЦП может препятствовать реакции Фентона: образования OH· радикалов при взаимодействии Fe2+ c H2O2,:
Fe2+ + H2O2 ® Fe3+ + OH- + OH· .
С помощью сайт-направленного мутагенеза для ферроксидазной реакции доказана важность амк.о.: E633, E567, H602, E935 и H940 [Brown et al., 2002].
Способствуя встраиванию в ферритин окисленного Fe3+, ЦП ингибирует супероксидное и ферритин-зависимое перекисное окисление липидов (ПОЛ) [Samokyszyn et al., 1989]. Описанные выше свойства ЦП послужили основой для объяснения его противовоспалительной активности, что вместе с быстрым возрастанием концентрации ЦП (в 2-3 раза) в русле крови уже в начале воспалительной реакции позволяет причислить его к белкам “острой фазы” [Whanger & Weswig, 1970]. Показано, что ЦП может выступать как фактор роста, вследствие антиоксидантных свойств [Alcain et al., 1991].
Пептиды - карнозин, гомокарнозил и ансерин способны препятствовать свободно-радикальному образованию дитирозиновых сшивок в ЦП [Kang et al., 2002]. Эти пептиды также препятствуют образованию
под действием системы ЦП/H2O2 агрегатов a-синуклеина, ключевого компонента телец Леви патогномонических для болезни Паркинсона [Kim et al., 2002]. В присутствии гомоцистеина ЦП способен ускорять окисление липопротеинов низкой плотности (ЛПНП) за счет восстановления ионов Cu2+ в ЦП до Сu+ [Exner et al., 2002]. Альдегидная группа глюкозы также способна усилить действие ЦП в процессе окисления ЛПНП [Leoni et al., 2002]. Окисление ЛПНП зависит также от интактности молекулы ЦП и количества ионов меди, связанных с ЦП [Mukhopadhyay et al., 1996]. С помощью сайт-направленного мутагенеза по замене лигандирующих медь His был определен участок молекулы в районе H426, ответственный за прооксидантные свойства ЦП [Mukhopadhyay et al., 1997].
In vivo было продемонстрировано защитное действие ЦП при действии на клетки HepG2 концентраций NO превышающих физиологические.
4GSH + 4NO + O2 ® 4GSNO + 2H2O
ЦП катализирует образование нитротиолов, при реакции GSH и NO происходит перенос электрона из NO с иона меди I типа на кластер ионов меди II и III типа с последующим четырехэлектронным переносом на кислород и образованием воды [Inoue et al., 1999].
GPI-форма ЦП сетчатки, вероятно, противостоит опосредованному квантами света окислительному стрессу и препятствует накоплению железа, которое приводит к помутнению сетчатки у больных с дефектом гена ЦП. Поскольку уровень ЦП-мРНК возрастает в 8 раз после освещения сетчатки, был выявлен во всех типах клеток сетчатки и превосходил количество ЦП, найденное в остальных структурах мозга [Chen et al., 2003].
Церулоплазмин в центральной нервной системе
Экспрессия гена ЦП в ЦНС была обнаружена в сетчатке и некоторых структурах мозга мыши и человека [Klomp et al., 1996; Klomp & Gitlin, 1996]. У больных ацерулоплазминемией наблюдаются осложнения, вызванные свободно-радикальными процессами и отложениями железа в тканях, в т.ч. в нервной, и, как следствие этого, нарушение функций ЦНС и помутнение сетчатки. Эти факты убеждают в значимости ЦП, как антиоксиданта и ключевого звена метаболизма железа в ЦНС. Действительно, нарушение системы GPI-заякоренный ЦП и IREG1 на мембране астроцита нарушает отток железа в глиальные клетки опосредованный DMT1 [Jeong & David, 2003]. Высказано предположение об антиоксидантном и детоксицирующем действии ЦП на цереброспинальную жидкость [Mittal et al., 2003].
С помощью техники patch-clamp на клетках нейробластомы была продемонстрирована способность ЦП осуществлять быструю деполяризацию мембраны. Термически денатурированный или лишенный меди ЦП не обладал этой способностью. Деполяризующий эффект ЦП опосредован ингибированием K+-каналов, а не увеличением притока Na+ или Ca2+ ионов [Wang et al., 1995]. Предварительная обработка сывороточной аминооксидазой быка ингибировала деполяризующее действие ЦП, кроме того, аминооксидаза активировала K+-каналы ингибированные ЦП [Wu et al., 1996]. Эксперименты на модели развития нервных клеток – линии Р 19 эмбриональной карциномы мыши, продемонстрировали действие ЦП на агрегацию нейронов вышедших в дифференцировку. Наблюдалась зависимость как от концентрации ЦП, так и от времени начала выхода клеток в дифференцировку. Другие медьсодержащие белки сыворотки, комплексы меди и денатурированный ЦП не обладали способностью вызывать агрегацию клеток. Было отмечено связывание меченного ЦП, очевидно посредством рецептора на поверхности молодых клеток, а также уменьшения этого взаимодействия со старением нейронов [Maltais et al., 2003].
Регуляция уровня биогенных аминов
В число субстратов, окисляемых ЦП, входят норадреналин, относящийся к катехоламиновым гормонам, и такой нейрогуморальный агент, как 5-гидрокситриптамин (серотонин) [Wallas et., 1964]. Молекулярный механизм, лежащий в основе катализа, до конца не ясен, но участие ЦП в метаболизме нейромедиаторов центрального действия чрезвычайно важно, тем более, что местом действия ЦП, вполне вероятно, является ЦНС, поскольку фермент поглощается из плазмы крови клетками мозга [Linder & Moor, 1977].
Как оказалось, синтетический диэтиламид D-лизергиновой кислоты (ЛСД), известный своим галлюциногенным действием, подавляет окисление серотонина, но ускоряет окисление норадреналина и дофамина в мозгу [Barchas & Freedman, 1963], и в концентрации, равной 10% от концентрации нейромедиатора, ЛСД угнетает катализируемое ЦП окисление серотонина в 2 раза, тогда как скорость окисления норадреналина увеличивается в 4 раза. Величины Km для норадреналина и серотонина близки - 3 мкМ и 1 мкМ, соответственно. Вполне вероятно, что ЦП контролирует их соотношение в мозговых структурах, и тогда действие ЛСД на ЦНС объясняется нарушением баланса между ними.
Ингибирование NO-зависимого клеточного ответа
Оксид азота (NO), помимо регуляции агрегации тромбоцитов, участия в нейромедиаторных процессах и других функций, участвует также в передаче сигнала от эндотелиальных клеток к гладкомышечным. В ответ на действие ацетилхолина, повышающего концентрацию ионов Ca2+, который активирует NO-синтетазу, из аргинина образуется NO и цитрулин. NO диффундирует в гладкомышечную клетку, где активируя гуанилатциклазу, вызывает мышечное расслабление, опосредованное активацией cGMP-протеинкиназы. Было продемонстрировано ингибируещее действие физиологических концентраций ЦП на расслабление аорты кролика [Cappelli-Bigazzi, 1997]. Действие ЦП и гистидинового медного комплекса, но не свободной меди, уменьшало уровень NO, цитрулина и cGMP, что свидетельствует об опосредованном ЦП ингибировании NO-синтетазы. Косвенно, это подтверждается данными об увеличении риска сердечно-сосудистых заболеваний у пациентов с повышенным уровнем меди сыворотки [Bianchini et al., 1999].
Белок-белковые комплексы
В 90-х годах в свете обнаружения белковых комплексов ЦП, стало возможно говорить о его новых функциях. В процессе свертывания крови, в результате протеолиза церулоплазминоподобные кофакторы F V и F VIII, активируются, и принимают конформацию, благоприятную для образования комплексов с протеазами F IXa и F Xa, активирующими F II и F X. Антикоагулянт, протеин С, в результате ограниченного протеолиза F Va и F VIIIa способен ингибировать протеолитический каскад свертывания крови. Находясь в конкурентных отношениях с факторами свертывания крови (ФСК) за связывание с протеином
C, ЦП мог бы участвовать в регуляции коагуляции. Декапептид ЦП (1028HAGMETTYTV1037) разобщает комплекс ЦП с протеином С и снимает эффект 5-кратного увеличения активности ЦП в комплексе [Walker & Fay, 1990]. Однако, после сообщения о взаимодействии ЦП с протеином С, ряд гематологов поставили под сомнение гипотезу о способности усиливать коагуляцию ЦП in vivo, что было подтверждено исследованиями показателей гемостаза у здоровых людей и у пациентов с дефектами F V [De Visser et al., 2002]. Взаимодействуя с миелопероксидазой [Segelmark et al., 1997], ЦП ингибирует ее опасные прооксидантные свойства:
H2O2 + Cl- ® ClO- + H2O.
Вероятно, это имеет значение при чрезмерной активации кислородного взрыва в очаге воспаления и распространение его по руслу крови. Однако, взаимодействие с миелопероксидазой не влияет на оксидазные, на пероксидазные и иммунореактивные свойства ЦП [Park et al., 2000].
Группа Aust показала, что для полноценного встраивания Fe3+ в ферритин важны не только ферроксидазная активность ЦП, но также взаимодействие интактной молекулы ЦП с ферритином [Juan & Aust, 1998; Reilly et al., 1998; Van Eden & Aust, 2000].
Взаимодействие ЦП с нейропептидом PACAP 38 [Tams et al., 1999], возможно, играет определенную роль в нейрорегуляторных процессах, и особенно интересно в свете обнаружения мембраносвязанного ЦП в астроцитах, который участвует в регуляции уровня железа в ЦНС и предотвращении свободно-радикальных реакций [Patel & David, 1997; Patel et al., 2002]. Было продемонстрировано, что среди всех белков плазмы крови, именно ЦП связывается PACAP 38, кроме того, для этого взаимодействия достаточно С-концевого декапептида (29-38) [Tams et al., 1999].
Взаимодействие ЦП с ЛФ [Zakharova et al., 2000], бактерицидным белком нейтрофилов, молока и других секретов, интересно в свете бактерицидного действия ЦП в присутствии Fe2+ и фосфатов [Klebanoff, 1992]. В экспериметрах in vivo была показана циркуляция комплекса ЦП крысы – ЛФ человека в течение 5 часов после введения крысе 10 мг ЛФ [Zakharova et al., 2000]. Эксперименты in vitro указывают на возможность встривания ионов меди в ЛФ при протеолитической или окислительной деградации ЦП. Продемонстрирована электростатическая природа этого взаимодействия, а также увеличение аффинности комплекса при протеолизе ЦП [Pulina et al., 2002].
GPI-заякоренный ЦП астроцитов физически взаимодействует с IREG1 и способствует оттоку Fe3+ из астроцитов. Взаимодействие доказано с помощью коиммунопреципитации и колокализации на мембране астроцита при двойной метке флуоресцентными антителами к ЦП и IREG1 [Jeong and David, 2003].
Филогения и свойства медьсодержащих белков
Доменная организация ЦП позволяет выдвинуть гипотезу о его происхождении вследствие трипликации предкового гена, кодирующего примитивную оксидазу [Dwulet & Putnam, 1981]. Оксидазы других представителей живого мира во многом гомологичны ЦП, что говорит в пользу гипотезы происхождения медьсодержащих оксидаз от общего гена [Ohkawa et al., 1989; Ryden, 1988].